Os cientistas estudaram detalhadamente a estrutura tridimensional de um dos menores sistemas CRISPR-Cas13 conhecidos, o CRISPR-Cas13bt3, que é usado para modificação de RNA e opera de forma diferente de outras proteínas da mesma família. Esta descoberta permite-lhes melhorar a precisão da ferramenta, permitindo um melhor acesso e entrega ao site de edição alvo, permitindo-lhes potencialmente combater os vírus de forma mais eficaz, visando o RNA.

Cientistas da Rice University detalharam a estrutura tridimensional de um dos menores sistemas CRISPR-Cas13 conhecidos para cortar ou modificar RNA e usaram suas descobertas para modificar ainda mais a ferramenta para melhorar sua precisão. Segundo estudo publicado na Nature Communications, a molécula funciona de maneira diferente de outras proteínas da mesma família.

“Existem diferentes tipos de sistemas CRISPR, e o foco do nosso estudo desta vez é aquele chamado CRISPR-Cas13bt3”, disse Yang Gao, professor assistente de ciências biológicas e pesquisador do Instituto de Prevenção e Pesquisa do Câncer do Texas, que ajudou a liderar o estudo. "O que é único nisso é que é muito pequeno. Normalmente, moléculas como esta contêm cerca de 1.200 aminoácidos, e esta tem apenas cerca de 700, então isso já é uma vantagem."

Emmanuel Osikpa (da esquerda) e Deng Xiangyu

O tamanho pequeno é uma vantagem, pois permite melhor acesso e entrega ao site de edição alvo. Ao contrário dos sistemas CRISPR associados à proteína Cas9, que normalmente tem como alvo o DNA, os sistemas relacionados ao Cas13 têm como alvo o RNA, que são as "instruções" intermediárias para converter a informação genética codificada no DNA em um modelo para montar uma proteína.

Os investigadores esperam que estes sistemas de direcionamento de ARN possam ser usados ​​para combater vírus, que normalmente utilizam ARN em vez de ADN para codificar a sua informação genética.

“Meu laboratório é um laboratório de biologia estrutural”, disse Gao Yang. "Estamos tentando entender como esse sistema funciona. Portanto, parte do nosso objetivo é poder vê-lo em três dimensões e criar um modelo que nos ajude a explicar seus mecanismos."

Modelo molecular mínimo CRISPR-Cas13bt3 feito com microscopia crioeletrônica. O RNA a ser reconhecido e cortado é mostrado em azul claro, enquanto a tesoura é composta por domínios em magenta e ciano. Os dois loops que controlam o CRISPR-Cas13bt3 são mostrados em verde e vermelho, respectivamente. Fonte da imagem: Laboratório Gao Yang/fornecido pela Rice University

Os pesquisadores usaram microscopia crioeletrônica para mapear a estrutura do sistema CRISPR, colocando a molécula sobre uma fina camada de gelo e disparando um feixe de elétrons através dela, gerando dados que foram então processados ​​em um modelo tridimensional detalhado. Os resultados os surpreenderam.

"Descobrimos que este sistema implanta um mecanismo diferente de outras proteínas da família Cas13, que possuem dois domínios que inicialmente se separam, e depois que o sistema é ativado, eles se unem - um pouco como os dois braços de uma tesoura - e fazem o corte. Este sistema é completamente diferente: a tesoura já existe, mas precisa prender a fita de RNA no local alvo certo. Para fazer isso, ele usa um elemento de ligação nessas duas alças exclusivas para conectar diferentes partes da proteína. "

Emmanuel Osikpa (da esquerda), Xue Sherry Gao, Xiangyu Deng, Jamie Smith, Seye J. Oladeji e Yang Gao. Crédito da foto: Jeff Fitlow Photography/Rice University

Xiangyu Deng, associado de pós-doutorado no laboratório de Gao Yang, disse: "Determinar a estrutura do complexo de proteína e RNA é realmente desafiador, e temos que solucionar muitos problemas para tornar o complexo de proteína e RNA mais estável para que possamos mapear sua estrutura. "

Depois que a equipe descobriu como o sistema funcionava, os pesquisadores do laboratório da engenheira química e biomolecular Shirley Gao começaram a ajustar o sistema para melhorar sua precisão, testando sua atividade e especificidade em células vivas.

"Descobrimos que esses sistemas foram capazes de atingir o alvo mais facilmente durante a cultura celular", disse Sherry Gao, professor assistente de engenharia química e biomolecular do Ted N. Law. "O que é realmente valioso neste trabalho é que os insights detalhados da biologia estrutural nos permitiram identificar racionalmente os esforços de engenharia necessários para melhorar a especificidade da ferramenta, mantendo ao mesmo tempo uma alta atividade de edição de RNA alvo."

Deng Xiangyu Fonte da imagem: JeffFitlow/Rice University

Emmanuel Osikpa, assistente de pesquisa no laboratório de Xue Gao, conduziu experimentos com células e confirmou que o Cas13bt3 projetado pode atingir grupos de RNA específicos com alta fidelidade.

“Consegui mostrar que este Cas13bt3 projetado teve um desempenho melhor do que o sistema original”, disse Osikpa. "O estudo abrangente da estrutura destacou as vantagens de uma abordagem direcionada e orientada pela estrutura em relação às telas de mutagênese aleatória dispendiosas e em larga escala."